Ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология
Файнфельд И.А., доктор биологических наук, профессор Крылов А.В., доктор биологических наук, профессор
Низкий С.Е., кандидат биологических наук, доцент
(Дальневосточный государственный аграрный университет)
ИММУНИЗАЦИЯ - АНТРОПОГЕННЫЙ ФАКТОР СРЕДЫ ПРИ ТРИХИНЕЛЛЕЗЕ
Актуальность исследования: Загрязнение окружающей среды - нежелательное изменение ее свойств в результате антропогенного поступления различных веществ и соединений. Оно приводит или может привести в будущем к вредному воздействию на литосферу, гидросферу, атмосферу, на растительный и животный мир, на здания, конструкции, материалы, на самого человека. Оно подавляет способность природы к самовосстановлению своих свойств. Мы стоим перед дилеммой: с одной стороны, без энергии нельзя обеспечить благополучия людей, а с другой - сохранение существующих темпов ее производства и потребления может привести к разрушению окружающей среды, и как следствие - к снижению жизненного уровня и даже нанести серьезный ущерб человеческой популяции, влияя на генетический код человека.
Ключевые слова: продукты ядерных взрывов, технологические сбросы, радиоактивные вещества, тяжелые металлы, закисление природной среды.
IMMUNIZATION - ANTROPOGENIC ENVIROMNVENTAL FACTOR AT TRICHINOSIS
Gelmatak at a dose of 1.5 ml per day has influence offourfold of sterilizing on the survived of larvae of trichinella on white rats. Term of parasitizes such helminths in the intestine reduced (8-10 days), reproductive function is completely lost. Rats, dogs, arctic foxes were infected. Experimental rats survived when administered a lethal dose of trichinella. In muscles of infected dogs found 8 times less larval than in muscles of control animals. The appetite of arctic fox normalized a day after immunization. 25 days after infection in the muscles of the experimental animals was 27 times less of larvae than controls animals. Immunization influence on the parasitocenoses when compared with the experimental stress opposite way: the development of trichinella suppressed and resistance of host increases.
Keywords: Immunization, the parasite, trichinella, hookworms, sterilization, living environment, anthropogenic factor.
Введение. Организм, использующий другой организм как среду жизни, менее восприимчив к воздействию факторов внешней среды, в том числе антропогенных. Ранее мы рассмотрели влияние на паразитоценоз экспериментального стресса при трихинеллезе, заболеванию, которому среди антропозоогельментозов принадлежит ведущее место [3]. Все виды, используемого в экспериментах стресса приводили к ослаблению хозяина и, как следствие, к укреплению популяции паразитов в результате выживания трихинелл, которые в нестресси-рованном хозяине неизбежно были бы элиминированы.
Отметим, что иммунизация, эффективная против вирусов и бактерий, до сих пор является нерешённой проблемой для паразитов [4]. Иммунная система животных сильнее реагирует на инвазирование трихинеллами, чем на другие инвазии. Наиболее эффективен против паразитических животных довольно малочисленный иммуноглобулин Е (1§Е). Так как ранее
было показано, что при лечении тиабендазолом и гельматаком происходит гибель части личинок, выжившие личинки становятся стерильными [2]. Особое внимание в наших исследованиях было уделено получению иммуногена.
Ранее нами впервые было выявлено стерилизующее действие гельматака (парбендазола) на трихинелл, а также иммунизирующее действие стерилизованных личинок на хозяина [5].
Методика исследований. Первый этап наших исследований был связан с подготовкой иммуногена. Для этого в качестве подопытных животных использовали 50 белых крыс массой 180 - 200 граммов, которых разделяли на четыре группы. Каждая группа включала по 10 крыс, за исключением третьей, состоящей из 20 животных. Каждую группу заражали отдельным видом трихинелл в дозе 200 личинок на крысу. Возраст личинок составлял не менее 60 дней. Животных содержали по группам в отдельных клетках на одинаковом рационе.
Для выделения личинок мышечную ткань лабораторных, экспериментально инвазиро-ванных различными видами трихинелл животных переварили в искусственном желудочном соке. Всю дозу в 200 личинок трихинелл определенного вида в небольшом объеме физиологического раствора пипеткой вводили в глотку каждому животному. Через 45 - 50 дней всех крыс убивали, кроме 10 особей, входивших в состав 3 - й группы. У убитых животных личинки трихинелл подсчитывали при обычной трихинеллоскопии в четырех мускулах. Учитывали живых и мертвых личинок, а также состояние инкапсуляции клеточной инфильтрации вокруг них.
Для получения иммуногена мы использовали стерилизацию гельматаком личинок трихинелл. Для этого группе подопытных крыс спустя 4 мес. после заражения Т. spiralis в течение четырех суток вводили гельматак в дозе 1,5 мл в сут. Через неделю после окончания курса крысы были забиты, а их тушки переварены в искусственном желудочном соке. Полученными после такого переваривания тушек живыми личинками трихинелл, сохранившими нормальную морфологию и локомоторную функцию, заразили группу из 12 крыс с массой тела 180 - 200 г в дозе 300 личинок на животное. Заразили также 12 контрольных крыс ин-тактными Т. spiralis в дозе 100 личинок на животное.
Результаты исследований. Через 6 сут. исследовали одну крысу из подопытной группы. В ее кишечнике обнаружили 8 трихинелл, в числе которых были две половозрелые самки, один самец и 5 неполовозрелых особей. Самец не имел видимых признаков повреждения. Самки были осеменены, однако ход эмбриогенеза имел нарушения - полость матки была заполнена гомогенным зернистым детритом, встречались отдельные яйца и эмбрионы. Одновременное исследование особи из контрольной группы выявило в тонком кишечнике 52 половозрелых трихинеллы. Самки были осемененными, с эмбрионами, ход эмбриогенеза нормальный.
Через 7 сут. после заражения мы вновь исследовали по одной крысе из подопытной и контрольной групп. В кишечнике крысы из подопытной группы было обнаружено 15 трихинелл - 10 самцов и 5 самок. Самцы были половозрелыми, без видимых признаков повреждения. Самки, как и в предыдущем случае, были осеменены, однако эмбриогенез также имел отклонения - полость матки была заполнена детритом, встречались лишь единичные яйца и отдельные эмбрионы. В кишечнике крысы из контрольной группы содержалось 48 половозрелых трихинелл - самцы со спермой и самки с эмбрионами.
Через 8 сут. после заражения мы исследовали еще по одной крысе из подопытной и контрольной групп. В кишечнике особи из подопытной группы обнаружен один половозрелый самец. В кишечнике крысы из контрольной группы содержалось 57 половозрелых трихинелл без видимых признаков изменений.
Остальных подопытных и контрольных животных исследовали через 10 сут. после заражения. Ни в кишечнике, ни в скелетных мышцах подопытных крыс трихинелл не было обна-
ружено. В кишечнике контрольных крыс содержалось от 38 до 46 половозрелых трихинелл; в скелетных мышцах были обнаружены юные и подросшие личинки, что соответствовало сроку заражения.
Таким образом, гельматак в использованных дозах оказал стерилизующее действие на оставшихся в живых личинок трихинелл. Последние сохраняли нормальную морфологию, а после декапсуляции перевариванием в искусственном желудочном соке - и нормальную локомоторную функцию. Срок паразитирования таких гельминтов в кишечнике подопытных животных был резко сокращен (8 - 10 сут.), репродуктивная способность полностью отсутствовала.
Иммунизация была проведена на крысах, собаках и песцах. В группе из 12 крыс с массой тела 180 - 200 г вводили стерилизованных личинок Т. spiralis четырехкратно с 2-дневным промежутком между введениями в дозах 100, 200, 450 и 1500. Спустя 4 сут. после введения последней иммунизирующей дозы исследовали двух подопытных животных, в их кишечниках трихинелл не обнаружено.
На следующий день подопытных и контрольных животных заразили интактными Т. spi-ralis в дозе 100 личинок на животное. Начиная со 2-х сут. через каждые сутки исследовали по одной крысе из подопытной и контрольной трупп. В опыте основная масса трихинелл не достигла развития, встречались особи в 3 раза мельче обычных. Лишь единичные паразиты достигли половой зрелости, однако у самок ход эмбриогенеза был нарушен - на поздних сроках полость матки у них была заполнена гомогенным мелкозернистым детритом от рассосавшихся эмбрионов, встречались лишь единичные личинки, лежавшие в скорлупе.
В следующих экспериментах было выявлено, что при иммунизирующей дозе, равной 1500 - 2000 стерилизованных личинок, и проверочной дозе в 500 нормальных личинок количество паразитов спустя 28-30 сут. было в 5 - 11 раз меньше, чем в контроле. Иммунизация в дозе 3000-3500 стерилизованных личинок предупреждает необратимые изменения в организме крыс, вызываемые смертельной дозой трихинелл. Подопытные животные, в отличие от контрольных, выживали.
Аналогичный эксперимент был проведен на собаках, которым вводили стерилизованных личинок трихинелл из расчета 3 - 4 экз. на 1 г массы тела. Спустя 90 сут. трех подопытных и трех интактных -животных, использовавшихся в качестве контроля (животные были по возможности одинаковыми, с массой тела 7 - 9 кг), заразили интактными личинками Т. spiralis в дозе 15 экз. на 1 г массы тела. Спустя 30 сут. после заражения исследование мышечной ткани подопытных и контрольных животных показало, что в опыте в мышцах собак было в 8 раз меньше личинок, чем в контроле (так, в 1 г икроножной мышцы в опыте у одной собаки было 16 личинок, у другой - 2, у третьей - 8, тогда как в контроле было соответственно - 85, 64 и 74).
После этих исследований действие стерилизованных гельматаком личинок Т. spiralis было проверено И. А. Файнфельдом с Л. А. Губа [1] в производственных условиях на песцах в зверосовхозе «Дубовский» Свободненского района. Для этого четырем подопытным песцам месячного возраста с массой тела 4 - 5 кг ввели энтерально стерилизованных личинок Т. spi-ralis из расчета 3 личинки на 1 г живой мас
Для дальнейшего прочтения статьи необходимо приобрести полный текст. Статьи высылаются в формате PDF на указанную при оплате почту. Время доставки составляет менее 10 минут. Стоимость одной статьи — 150 рублей.